دوره 5، شماره 4 - ( 12-1397 )                   جلد 5 شماره 4 صفحات 448-438 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print

Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Afshar Mohammadian M, Kordi S. Comparative evaluation of enzymatic and non-enzymatic antioxidants of petal of three species of saffron . nbr 2019; 5 (4) :438-448
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-2888-fa.html
افشار محمدیان منصور، کردی شیرین. ارزیابی مقایسه ای آنتی اکسیدان های آنزیمی و غیرآنزیمی گلبرگ سه گونۀ زعفران . یافته‌ های نوین در علوم زیستی. 1397; 5 (4) :438-448

URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-2888-fa.html

ارزیابی مقایسه ای آنتی اکسیدان های آنزیمی و غیرآنزیمی گلبرگ سه گونۀ زعفران
منصور افشار محمدیان* ، شیرین کردی
دانشگاه گیلان ، afshar@guilan.ac.ir
چکیده:   (5412 مشاهده)

امروزه استفاده از گروه وسیعی از گیاهان دارویی از قبیل زعفران و ترکیبات آروماتیک آنها به­ مثابۀ منابع طبیعی که دارای خاصیت آنتی­ اکسیدانی هستند، به ­صورت روز افزون مورد توجه قرار گرفته است. علاوه بر كلاله زعفران، گلبرگ زعفران نيز يك منبع گياهي غني از تركيبات آنتي ­اكسيداني است. تحقیق حاضر در قالب آزمایشی با طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار، به بررسی برخی از آنتی­ اکسیدان­ های آنزیمی و غیرآنزیمی گلبرگ­ های دو گونۀ زعفران وحشی استان گیلان و مقایسۀ آن با آنتی ­اکسیدان­ های زعفران زراعی (C. sativus) پرداخته است. نتایج این تحقیق نشان داد که میزان فنل کل، فلاونویید و آنتوسیانین در گونۀ زعفران زراعی به­ صورت معنی­ داری بیشتر از دو گونۀ دیگر  است. میزان فلاونل در گونۀ  زعفران زیبا (C. speciosus) و میزان فعالیت آنتی­ اکسیدانی (DPPH) در گونۀ زعفران خزری (C. caspius) به ­صورت معنی­ داری بیشتر از گونه­ های دیگر بود. میزان فعالیت آنزیم پلی فنل اکسیداز در گونه ­های زعفران زراعی و زعفران زیبا نیز به­ صورت معنی ­داری بیشتر از گونۀ زعفران خزری بود، ولی در مورد میزان فعالیت آنزیم پلی فنل اکسیداز اختلاف مع نی­داری بین سه گونۀ بررسی شده مشاهده نشد. بنابراین، با توجه به نتایج این تحقیق، گلبرگ گون ه­های مختلف زعفران منبع خوبی از نظر دارا بودن آنتی­اكسیدان­ های غیرآنزیمی و آنزیمی محسوب می­ شوند و می­ تواند مثل یک منبع آنتی ­اكسیدان طبیعی در دسترس، در صنایع غذایی و دارویی مورد استفاده قرار گیرد.  
 

واژه‌های کلیدی: پراکسیداز، پلی­ فنل اکسیداز، فنل، فلاونویید، فعالیت آنتی­ اکسیدانی
متن کامل [PDF 1027 kb]   (2520 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: علوم گیاهی
دریافت: 1396/4/2 | ویرایش نهایی: 1400/3/11 | پذیرش: 1397/7/4 | انتشار: 1397/12/27 | انتشار الکترونیک: 1397/12/27
فهرست منابع
1. Afraze, Z., Bolandi, M., Khorshidi, M. and Mohammadi, N.A. 2014. Evaluation of antioxidant activity of aqueous and alcoholic extracts (methanol, ethanol) saffron petals. – J. Saf. Agron. Technol. 2: 231-236.
2. Agha Hosseini, M., Kashani, L., Aleyaseen, A., Ghoreishi, A., Rahmanpour, H. and Zarrinara, A. 2008. Crocus sativus L. (saffron) in the treatment of premenstrual syndrome: a double‐blind, randomised and placebo‐controlled trial. – BJOG. 115: 515-519. [DOI:10.1111/j.1471-0528.2007.01652.x]
3. Akhondzadeh Basti, A., Moshiri, E., Noorbala, A.A., Jamshidi, A.H., Abbasi, SH. and Akhondzadeh, S. 2007. Comparison of petal of Crocus sativus L. and fluoxetine in the treatment of depressed outpatients: a pilot double-blind randomized trial. Progress Neuropsychopharmacology and Biological Psychi-atry. 31: 439-442. [DOI:10.1016/j.pnpbp.2006.11.010]
4. Anjum, N., Pal, A. and Tripathi, Y.C. 2015. Phytochemistry and pharmacology of saffron, the most precious natural source of colour, flavour and medicine. – SMU. 2: 335-346.
5. Bakhshi, D. and Arakawa, O. 2006. Induction of phenolic compounds biosynthesis with light irradiation in the flesh of red and yellow apples. – J. Appl. Horticul. 8: 101-104.
6. Beauchamp, C. and Fridovich, I. 1971. Superoxide dismutase: Improved assay and an assay applicable to acrylamide gels. – Anal. Biochem. 44: 276-282. [DOI:10.1016/0003-2697(71)90370-8]
7. Bergmeyer, H.U. 1974. Methods of Enzymatic Analysis 1, 2nd Edition, p: 495. – Academic Press, New York.
8. Bradford, M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. – Anal. Biochem. 72: 248-254. [DOI:10.1016/0003-2697(76)90527-3]
9. Delgrado, M.C., Aramburu, A. and Dìaz-Marta, G.L.A. 2006. The Chemical Composition of Saffron: Color, Taste and Aroma, Editorial Bomarzo, Albacete.
10. Fatehi, M., Rashidabady, T. and Fatehi- Hassanabad, Z. 2003. Effects of Crocus sativus petals' extract on rat blood pressure and on responses induced by electrical field stimulation in the rat isolated vas deferens and guinea-pig ileum. – J. Ethnopharmacol. 84: 199- 203. [DOI:10.1016/S0378-8741(02)00299-4]
11. Finkel, T. and Holbrook, N.J. 2000. Oxidants, oxidative stress and the biology of aging. – Natur. J. 408: 239-247. [DOI:10.1038/35041687]
12. Garido, J., Diez de Bethencourt, C. and Revilla, E. 1987. Flavonoid composition of hydrolysed tepal extracts of Crocus sativus L. – Anal. Bromatol. 39: 69-77.
13. Ghaeidamini, M., Shahrokhi, A., Khodakarimi, A. 2011. The impact of climate change on flowering behavior of saffron. National Conference on Climate Change and its Impact on Agriculture and Environment, Uremia.
14. Gill, S. S. and Tuteja N. 2010. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. – Plant Physiol. Biochem. 48: 909-930. [DOI:10.1016/j.plaphy.2010.08.016]
15. Gregory, R.P.F. and Bendali, D.S. 1966. The Purification and some Properties of the Polyphenol Oxidase from Tea (Camellia sinensis L.). – Biochem. J. 101: 569. [DOI:10.1042/bj1010569]
16. Hadizadeh, F., Khalili, N., Hosseinzadeh, H. and Khair-Aldine, R. 2003. Kaempferol from Saffron Petals. – IJPR. 2: 251-252.
17. Hosseinzadeh, H. and Younesi, H.M. 2002. Antinociceptive and anti-inflammatory effects of Crocus sativus L. stigma and petal extracts in mice. – BMC Pharmacol. 2: 7-15. [DOI:10.1186/1471-2210-2-7]
18. Kafi, M., Hemmati-Kakhki, A. and Karbasi, A. 2006. Historical background, economy, acreage, production, yield and uses. pp: 1-11. – In: Kafi, M., Koocheki, A., Rashed, M.H., Nassiri, M. (eds.). Saffron (Crocus sativus) Production and Processing. – Sci. Publishers, Enfield. [DOI:10.1201/9781482280463]
19. Kahl, R. and Kappus, H. 1993. Toxicity of synthetic antioxidants BHT and BHA in comparison with natural antioxidants vitamin E. – Z. Lebensm.Unters. Forsch. 196: 329-38. [DOI:10.1007/BF01197931]
20. Karimi, E., Oskoueian, E., Hendra, R. and Jaafar, H. Z. E. 2010. Evaluation of Crocus sativus L. stigma phenolic and flavonoid compounds and its antioxidant activity. – Molecules 15: 6244-6256. [DOI:10.3390/molecules15096244]
21. Kaveh, H. 2016. Effect of saffron petal extract on retention quality of fresh-cut watermelon cubes. – Saffron Agro. Tech. 4: 301-311
22. Krizek, D.T., Kramer, G.F., Upadyaya, A. and Mirecki, R.M. 1993. UV-B response of cucumber seedling grown under metal halide and high pressure sodium/deluxe lamps. – Physiol. Plantarum 88: 350-358. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1993.tb05509.x]
23. Kubo, I. and I. Kinst-Hori 1999. Flavonols from Saffron Flower: Tyrosinase inhibitory activity and inhibition mechanism. – J. Agri. Food Chem. 47: 4121-4125. [DOI:10.1021/jf990201q]
24. Kulisic, T., Radonic, A. and Katalinic, V. 2004. Use of different methods for testing antioxidative of oregano essntial oil. – Food Chem. 85: 40-633. [DOI:10.1016/j.foodchem.2003.07.024]
25. Mahdavee Khazaei, K., Jafari, S.M., Ghorbani, M. and Hemmati Kakhki, A. 2014. Optimization of anthocyanin extraction in Saffron's petal with response surface methodology. – JRIFST. 3: 37-50.
26. Masukasu, H., Karin, O., and Kyoto, H. 2003. Enhancement of anthocyanin biosynthesis by sugar in radish (Raphanus sativus) hypocotyls. – Plant Sci. 164: 259-265. [DOI:10.1016/S0168-9452(02)00408-9]
27. Montoro, P., Tuberosob, C.I., Maldini, M., Cabrasb, P. and Pizza, C. 2008. Qualitative profile and quantitative determination of flavonoids from Crocus sativus L. petals by LC-MS/MS. – NPC. 3: 893-900. [DOI:10.1177/1934578X0800301215]
28. Moshiri, E., Basti, A.A., Noorbala, A.A., Jamshidi, A.H., Hesameddin Abbasi, S. and Akhondzadeh, S. 2006. Crocus sativus L. (petal) in the treatment of mildto- moderate depression: a double-blind, randomized and placebo-controlled trial. – Phytomedicine; 13: 607- 611. [DOI:10.1016/j.phymed.2006.08.006]
29. Nasirian, F., Sorush Zadeh, A., Ghanati, F., Oraki, H. 2014. The effect of root-zone temperature on antioxidant activities in saffron corm. – J. Saf. Agron. Technol. 2: 145-154.
30. Norbark, R., Brandt, K., Nielsen, J. K., girgaard, M. and Jacobsen, N. 2002. Flower pigment composition of crocus species and cultivars used for a chemotaxonomic investigation. – Biochem. Syst. Ecol. 30: 763-791. [DOI:10.1016/S0305-1978(02)00020-0]
31. Poli, G. and Parola, M. 1997. Oxidative damage and fibrogenesis. – Free Radic. Biol. Med. 22: 287-305. [DOI:10.1016/S0891-5849(96)00327-9]
32. Sarikurkcu, C., Tepe, B., Daferera, D., Polissiou, M. and Harmandar, M. 2008. Studies on the antioxidant activity of the essential oil and methanol extract of Marrubium globosum subsp. globosum (Lamiaceae) by three different chemical assays. – Bioresour. Technol. 99: 4239-4246. [DOI:10.1016/j.biortech.2007.08.058]
33. Sariri, R., Sabbaghzadeh, R. and Poumohamad, F. 2011. In-Vitro antioxidant and anti-tyrosinase activity of methanol extracts from Crocus Sativus flowers. – Pharmacol. 2: 1205-1215.
34. Sharififar, F., Moshafi, M.H. and Mansouri, S.H. 2007. In vitro evalution of antibacterial and antioxidant of the essential oil and methanol extract of endemic Zataria multiflora Boiss. – Food Cont. 18: 5-800. [DOI:10.1016/j.foodcont.2006.04.002]
35. Singh, G., Slinkard, K. and Singleton, V.L. 1977. Total phenol analyses: automation and comparison with manual methods. – Am. J. Enol. Viticul. 28: 49-559.
36. Singh Gill, S. & Tuteja, N. 2010. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiol. Biochem. 48: 909-930. [DOI:10.1016/j.plaphy.2010.08.016]
37. Turkina, M. 2008. Functional proteomics of protein phosphorylation in algal photosynthetic membranes, pp: 1-58. – Linköping, Sweden.
38. Venskutonis, P.R., Miliauskas, G. and van Beek, T.A. 2004. Screening of radical scavenging activity of some medicinal and aromatic plant extracts. – Food Chem. 85: 231-237. [DOI:10.1016/j.foodchem.2003.05.007]
39. Vuleta, A. and Tucic B. (2009) Thermal dependence of the antioxidant enzymes superoxide dismutase, catalase, and peroxidase in foliage of Iris pumila L. – Arch. Biol. Sci. 61: 441-446. [DOI:10.2298/ABS0903441V]
40. Yu, W., Zhao, Y. and Shu, B. 2004. The radical scavenging activities of radix pueraiae iso Flavonoids: Achemiluminescence study. – Food Chem. 86: 525-529. [DOI:10.1016/j.foodchem.2003.09.005]
41. Williams, C.A., Harborne, J.B. and Goldblatt, P. 1986. Correlations between phenolic patterns and tribal classification in the family iridaceae. – Phytochem. 25: 2135-2154. [DOI:10.1016/0031-9422(86)80079-6]
ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA
ارسال پیام به نویسنده مسئول

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

Creative Commons Licence
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.




کلیه حقوق این وب سایت متعلق به یافته های نوین در علوم زیستی است.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2015 All Rights Reserved | Nova Biologica Reperta

Designed & Developed by : Yektaweb